胚胎活檢完成后，獲取的少量細胞樣本（通常僅 3-10 個細胞）需經過保存、轉運、全基因組擴增（WGA）等多環(huán)節(jié)處理，才能進入后續(xù) PGT 檢測流程。很多人關注活檢操作本身的影響，卻容易忽視這些 “后續(xù)環(huán)節(jié)”—— 若樣本處理不當，是否會導致 PGT 檢測結果偏離胚胎真實遺傳狀態(tài)？答案是肯定的。從樣本離體后的保存條件，到轉運過程中的環(huán)境控制，再到實驗室擴增技術的穩(wěn)定性，每一步都可能成為影響檢測準確性的 “隱形變量”，需要逐一拆解其潛在風險與應對方案。

首先看樣本保存環(huán)節(jié)的影響?；顧z獲取的細胞樣本離體后，若不能及時進入檢測流程，需在專用保存液中暫存，保存液的成分、溫度及保存時間，直接決定細胞活性與 DNA 穩(wěn)定性。目前臨床常用的保存液分為 “常溫保存液”（20-25℃）和 “低溫保存液”（4-8℃），前者適合短時間保存（≤2 小時），后者可延長至 4-6 小時。若保存液成分失衡，如 EDTA（防止 DNA 降解的成分）濃度過低（低于 0.5 mmol/L），會導致細胞內核酸酶激活，約 15%-20% 的樣本會出現(xiàn) DNA 片段化，片段化的 DNA 在后續(xù)擴增中易產生 “非特異性擴增產物”，使 PGT-A 檢測出現(xiàn)假陽性（如誤判染色體微缺失），發(fā)生率約 6%-8%。

溫度波動是保存環(huán)節(jié)的另一大風險。常溫保存時，若環(huán)境溫度超過 28℃，細胞代謝速率加快，ATP 消耗增加，可能導致 DNA 復制酶活性下降，進而影響后續(xù) WGA 效率；低溫保存時，若溫度低于 2℃，會引發(fā)細胞內水分結冰，形成的冰晶會刺破細胞膜，約 10%-12% 的樣本會因此出現(xiàn)細胞破裂，DNA 釋放到保存液中，導致樣本 DNA 濃度降低，若濃度低于 10 pg/μL，會使 WGA 失敗率提升 25%-30%，直接導致 PGT 檢測無法進行。此外，保存時間過長也會增加風險 —— 常溫保存超過 4 小時，樣本 DNA 降解率可達 30% 以上，即使后續(xù)完成擴增，檢測結果的信噪比也會顯著下降，可能掩蓋真實的染色體異常信號，造成假陰性。

再看樣本轉運環(huán)節(jié)的潛在問題。若活檢與檢測不在同一實驗室進行，樣本需通過專用轉運箱轉運，轉運過程中的震動、溫度變化及污染風險，均可能影響樣本質量。震動強度超過 50 Hz 時，會導致保存液劇烈晃動，可能使細胞與保存液中的雜質（如容器壁脫落物）充分接觸，約 8%-10% 的樣本會因此出現(xiàn)雜質污染，若雜質中含有外源 DNA（如細菌、真菌或其他胚胎細胞），會在后續(xù)擴增中被同步放大，導致檢測結果出現(xiàn) “雜合信號”，例如在 PGT-M 檢測中，可能誤判胚胎同時攜帶正?；蚺c致病基因，造成檢測結果模糊。

溫度控制是轉運環(huán)節(jié)的核心難點。即使使用恒溫轉運箱，若箱內溫度波動超過 ±2℃（如夏季高溫或冬季低溫環(huán)境下），會導致樣本細胞出現(xiàn) “應激反應”，研究顯示，溫度波動超過 3℃時，細胞內應激基因（如 HSP70）表達會升高 2 倍以上，可能引發(fā) DNA 甲基化模式改變，這種表觀遺傳變化雖不影響染色體數目檢測，但會對單基因疾病的精準檢測（如需要區(qū)分甲基化位點的檢測項目）產生干擾，假陽性率可能升高 4%-5%。此外，轉運時間過長（超過 6 小時）會增加樣本暴露于外界環(huán)境的風險，若轉運箱密封性不佳，可能導致灰塵、微生物進入，進一步增加污染概率。

全基因組擴增（WGA）作為活檢樣本處理的關鍵步驟，其技術穩(wěn)定性直接決定 PGT 檢測結果的準確性。WGA 的核心目的是將少量細胞的 DNA 擴增至滿足檢測需求的量（通常需 1-2 μg），但擴增過程中可能出現(xiàn) “擴增偏倚”—— 即不同區(qū)域的 DNA 擴增效率不同，若某一染色體片段擴增效率過低（低于正常水平的 50%），會導致該片段在檢測中被誤判為 “缺失”，造成 PGT-A 檢測假陽性；若擴增效率過高（超過正常水平的 2 倍），則可能被誤判為 “重復”，假陽性率約 5%-7%。此外，WGA 過程中若出現(xiàn) “等位基因脫扣”（ADO），即某一等位基因未被擴增，會導致 PGT-M 檢測出現(xiàn)假陰性，例如胚胎實際攜帶致病基因，但因該基因未被擴增，檢測結果顯示為正常，ADO 發(fā)生率約 3%-6%，且與樣本細胞數量呈負相關（細胞數量越少，ADO 風險越高）。

WGA 環(huán)節(jié)的污染風險也不容忽視。實驗室環(huán)境中的外源 DNA（如操作人員的皮膚細胞、既往檢測樣本的殘留 DNA）若進入擴增體系，會被同步放大，約 10%-12% 的污染樣本會出現(xiàn) “混合基因型”，導致檢測結果無法準確判斷胚胎的真實遺傳狀態(tài)。例如，外源 DNA 攜帶某一染色體異常，會使原本正常的胚胎樣本被誤判為異常，造成假陽性。此外，擴增試劑的質量也會影響結果 —— 若試劑中存在 DNA 酶污染，會導致樣本 DNA 在擴增前被降解，約 5%-8% 的樣本會因此出現(xiàn)擴增失敗，需重新獲取樣本，而重復活檢會進一步增加胚胎損傷風險。

針對這些環(huán)節(jié)的風險，臨床已建立多維度質控體系。在樣本保存方面，采用 “成分精準配比” 的專用保存液（EDTA 濃度控制在 1-2 mmol/L），并通過實時溫度監(jiān)控儀確保保存溫度波動不超過 ±1℃，同時規(guī)定常溫保存不超過 2 小時、低溫保存不超過 6 小時；在轉運環(huán)節(jié)，使用防震（震動強度≤30 Hz）、恒溫（4-25℃可調）的專用轉運箱，配備雙重密封裝置，轉運時間嚴格控制在 8 小時內，且每批次轉運樣本均需附帶 “溫度 - 震動記錄報告”，不合格樣本直接剔除；在 WGA 環(huán)節(jié)，采用 “多重質控” 方案 —— 擴增前檢測樣本 DNA 濃度與純度，擴增后通過瓊脂糖凝膠電泳驗證擴增產物質量，同時設置空白對照（僅含試劑不含樣本）與陽性對照（已知基因型的標準 DNA），若對照出現(xiàn)異常，立即重新進行擴增，可使 WGA 失敗率降低至 5% 以下，擴增偏倚發(fā)生率控制在 3% 以內。

活檢后的樣本處理環(huán)節(jié)雖不直接涉及胚胎操作，卻是連接活檢與 PGT 檢測的關鍵橋梁，任何一步處理不當，都可能導致檢測結果 “失準”。但通過標準化的保存條件、嚴格的轉運控制及精準的 WGA 質控，可將這些風險降至最低。未來，隨著微流控芯片技術的發(fā)展（如將樣本保存、轉運、擴增集成于芯片內，減少外界干擾），樣本處理的穩(wěn)定性將進一步提升，為 PGT 檢測結果的準確性提供更堅實的保障。在當前技術階段，選擇具備完善樣本處理質控體系的實驗室，是確保 PGT 檢測結果可靠的重要前提，而非單純依賴活檢技術本身的先進性。

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